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书书书  中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 犛 犖/犜4 2 8 8—2 0 1 5 犗狆狋 犻 犿 狌 犿犐 狀 狋 狉 犪 狊 犲 犮 狋 中转基因成分定性犘 犆 犚 检测方法 犘 狉 狅 狋 狅 犮 狅 犾狅 犳 狇狌 犪 犾 犻 狋 犪 狋 犻 狏 犲 狆狅 犾狔犿 犲 狉 犪 狊 犲犮 犺 犪 犻 狀狉 犲 犪 犮 狋 犻 狅 狀犿 犲 狋 犺 狅 犱犳 狅 狉犱 犲 狋 犲 犮 狋 犻 狀 犵犵犲 狀 犲 狋 犻 犮 犪 犾 犾 狔犿 狅 犱 犻 犳 犻 犲 犱犮 狅 狉 狀犾 犻 狀 犲犗 狆狋 犻 犿 狌 犿犐 狀 狋 狉 犪 狊 犲 犮 狋 2 0 1 50 90 2发布 2 0 1 60 40 1实施 中 华 人 民 共 和 国 国家质量监督检验检疫总局发 布 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.书书书前  言   本标准按照 G B/T1. 1—2 0 0 9给出的规则起草 。请注意本文件的某些内容可能涉及专利 。本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任 。本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口 。本标准起草单位 :中国检验检疫科学研究院 、中华人民共和国深圳出入境检验检疫局 、中华人民共和国上海出入境检验检疫局 。本标准主要起草人 :黄新、凌杏园、潘良文、张丽丽、朱水芳、陈洪俊、段胜男。 Ⅰ犛 犖/犜4 2 8 8—2 0 1 5 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.犗狆狋 犻 犿 狌 犿犐 狀 狋 狉 犪 狊 犲 犮 狋 中转基因成分定性犘 犆 犚 检测方法 1 范围 本标准规定了转基因玉米 Opt i m u mI n t r a s e c t 中转基因成分定性实时荧光 P C R检测方法 。本标准适用于单粒玉米复合性状品系 Opt i m u mI n t r a s e c t (MON 8 1 0×T C 1 5 0 7×NK 6 0 3 )的检测,但不适合玉米加工产品中该品系成分的检测 。本标准中检测方法还适用于玉米及其产品中转基因单转化事件 B t 1 1、GA 2 1、MON 8 1 0 、MON 8 6 3 、 MON 8 9 0 3 4 、T C 1 5 0 7 、NK 6 0 3、T 2 5、MON 8 8 0 1 7 、5 9 1 2 2、M I R 6 0 4 、M I R 1 6 2 、LY 0 3 8、3 2 7 2和MON 8 7 4 6 0的检测。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的 。凡是注日期的引用文件 ,仅注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件 ,其最新版本 (包括所有的修改单 )适用于本文件 。 G B/T6 6 8 2 分析实验室用水规格和试验方法 G B/T1 9 4 9 5. 1 —2 0 0 4 转基因产品检测  通用要求和定义 G B/T1 9 4 9 5. 2  转基因产品检测  实验室技术要求 G B/T1 9 4 9 5. 3  转基因产品检测  核酸提取纯化方法 G B/T1 9 4 9 5. 7  转基因产品检测  抽样和制样方法 3 术语、定义和缩略语 3.1 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件 。 3.1.1转基因复合性状品系  狊 狋 犪 犮 犽 犲 犱犵犲 狀 犲 狋 犻 犮 犪 犾 犾狔犿 狅 犱 犻 犳 犻 犲 犱 狆犾 犪 狀 狋 狊是由两个和两个以上单转化事件 (t r a n sge n i ce v e n t )通过杂交或单转化事件再转化形成的叠合了两 个和两个以上性状的转基因新品系 。 3.1.2犗狆狋 犻 犿 狌 犿犐 狀 狋 狉 犪 狊 犲 犮 狋是由杜邦先锋公司研发的转基因玉米复合品系 ,由单转化事件 MON 8 1 0 ,T C 1 5 0 7 ,NK 6 0 3通过常 规杂交育成 ,叠合了源于品系 MON 8 1 0 的抗虫性状和源于品系 T C 1 5 0 7 和NK 6 0 3的耐除草剂草丁膦和草甘膦性状 。已在美国 、日本、加拿大、巴西和阿根廷等国家获得批准商业化 。 3.2 缩略语 下列缩略语适用于本文件 。 犃 犱 犺1(A l c o h o lD e h yd r oge n a s e) :乙醇脱氢酶基因 1犛 犖/犜4 2 8 8—2 0 1 5 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.bp(b a s epa i r) :碱基对 C t值(C:Cyc l e,t:t h r e s h o l d ) :每个反应管内荧光信号到达设定的域值时所经历的循环数 C TAB(c e tyl t r i t hyl a mm o n i u mb r o m i d e ) :十六烷基三甲基溴化铵 DNA(d e o xyr i b o n u c l e i ca c i d ) :脱氧核糖核酸 E DTA(e t hyl e n ed i a m i n e t e t r a a c e t i ca c i d ) :乙二胺四乙酸 P C R(po lym e r a s ec h a i nr e a c t i o n ) :简称P C R犜 犪狇(犜 犺 犲 狉 犿 狌 狊犪 狇狌 犪 狋 犻 犮 狌) :水生栖热菌 T E:T r i s  HC l 、E DTA缓冲液 TM(m e l t i ngt e mpe r a t u r e) :熔解温度 T r i s[t r i s(hyd r o xym e t hyl)a m i n o m e t h a n e ] :三(羟甲基)氨基甲烷 UNG酶(u r a c i l  N  glyc o syl a s e) :尿嘧啶 N 糖基化酶 (UNG)酶 犣 犲 犻 狀:玉米醇溶蛋白基因 4 方法提要 P C R反应过程中 ,荧光信号的累积与 P C R产物形成呈正相关 ,根据荧光信号的强度和扩增曲线 C t值判定样品中是否含有特定的转基因玉米转化事件 。由于现阶段已知转基因玉米复合品系均由已知的单转化事件玉米杂交而成 。在复合性状品系中 ,这些单转化事件的边界序列未发生改变 ,因此,通过对单粒玉米不同单转化事件玉米的检测 ,就可以判断该种子是由哪些单转化事件叠合而成 。 5 主要仪器及试剂 5.1 主要仪器 实时荧光 P C R仪;冷冻研磨仪 ;消毒灭菌锅 ;制冰机;核酸蛋白分析仪 ;高速冷冻离心机 ,台式小型离心机,M i n i个人离心机 ;低温冰箱 ;旋涡震荡器 ;微量移液器 ,生物安全柜 。 5.2 主要试剂 除另有规定外 ,所有试剂均为分析纯或生化试剂 。实验用水应符合 G B/T6 6 8 2 中一级水的规格 。玉米内源基因和各单转化事件检测用边界序列的引物和探针序列见附录 A。主要试剂参见附录 B。 6 防止污染措施 防止污染措施按 G B/T1 9 4 9 5. 2 的规定实施 。 7 抽样与制样 7.1 抽样 按照G B/T1 9 4 9 5. 7 中的规定获得实验室样品 。 7.2 制样 复合性状品系检测按单粒玉米种子检测 ,先用清洁剂彻底清洗种子表面 ,再用核酸酶彻底降解种子表面污染 DNA,最后用无菌水冲洗后晾干 。用剪刀将每粒种子对中剪开 ,一分为二 ,取半粒玉米种子 , 2犛 犖/犜4 2 8 8—2 0 1 5 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.用液氮或冷冻研磨仪将其粉碎至细粉状 。留存另外半粒玉米以备进一步验证 。 8 犇 犖 犃提取及浓度测定 8.1 犇 犖 犃提取 8.1.1 犆 犜 犃 犅方法 按照G B/T1 9 4 9 5. 3C TAB 法提取DNA中的C TAB  2 法。 或按以下步骤提取 DNA: a) 将待测样品磨碎 ,迅速转入 2mL离心管中 ,加6 5℃预热的C TAB提取液(B. 6)7 0 0μL,2μL蛋白酶K(B. 1 1) ,混匀,6 5℃水浴3 0m i n。 b)加5μLRN a s eA (B. 5) ,3 7℃水浴3 0m i n。 c)加入等体积 T r i s饱和酚,充分混匀 ,1 20 0 0r /m i n离心1 5m i n。 d)取上清,加入等体积的三氯甲烷 /异戊醇(2 4∶1) (B. 8)混匀,1 20 0 0r /m i n离心1 0m i n。 e)取上清,加入等体积的三氯甲烷 /异戊醇(2 4∶1)混匀,1 20 0 0r /m i n离心1 0m i n。 f)取上清,加入7 0%体积预冷的异丙醇 (B. 9) ,轻轻摇晃 ,置于-2 0℃冰箱静置 3 0m i n,1 20 0 0r/m i n离心1 0m i n。 g)弃上清,保留沉淀 ,加入7 0%乙醇(B. 1 0)5 0 0μL,1 20 0 0r /m i n离心3m i n,去上清,重复2次。 h)得到DNA沉淀,用冷冻干燥仪进行干燥 ,加入5 0μL~1 0 0μLT E(B. 7)或无菌去离子水 ,充分 溶解后,测定DNA的纯度和浓度 ,后置于-2 0℃冰箱中保存 。 8.1.2 试剂盒法 不同基因组 DNA提取试剂盒 ,使用时按操作说明书操作 。 8.2 犇 犖 犃浓度测定 样品DNA用紫外分光光度计测定 2 6 0n m 和2 8 0n m 处吸收值 ,分别计算核酸的纯度和浓度 ,计算 公式如下 : DNA纯度以OD2 6 0/OD2 8 0比值表示

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