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书书书  中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 犛 犖/犜4 1 0 4—2 0 1 5 猪支原体肺炎检疫技术规范 犙狌 犪 狉 犪 狀 狋 犻 狀 犲 狆狉 狅 狋 狅 犮 狅 犾 犳 狅 狉犕 狔犮 狅狆犾 犪 狊 犿 犪犺狔狅狆狀 犲 狌 犿 狅 狀 犻 犪 犲 2 0 1 50 20 9发布 2 0 1 50 90 1实施 中 华 人 民 共 和 国 国家质量监督检验检疫总局发 布 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.书书书前  言   本标准按照 G B/T1. 1—2 0 0 9给出的规则起草 。本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口 。本标准负责起草单位 :中华人民共和国重庆出入境检验检疫局 、中华人民共和国上海出入境检验检疫局、重庆动物疫病预防控制中心 、西南大学 、重庆正大有限公司 。本标准主要起草人 :聂福平、杨俊、张强、李应国、曾政、王昱、肖进文、程光胜、王豪举、夏明星。 Ⅰ犛 犖/犜4 1 0 4—2 0 1 5 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.猪支原体肺炎检疫技术规范 1 范围 本标准规定了猪支原体肺炎的病理学诊断方法 、病原分离和鉴定方法 、间接血凝试验 、酶联免疫吸附试验、聚合酶链式反应试验 。本标准适用于猪支原体肺炎的检疫 、诊断、流行病学调查 。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的 。凡是注日期的引用文件 ,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件 ,其最新版本 (包括所有的修改单 )适用于本文件 。 G B4 7 8 9. 2 8  食品安全国家标准  食品微生物学检验  培养基和试剂的质量要求 G B/T6 6 8 2 分析实验室用水规格和试验方法 G B1 9 4 8 9  实验室 生物安全通用要求 WS2 3 3—2 0 0 2 微生物和生物医学实验室生物安全通用准则 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件 。 3.1猪支原体肺炎 (犕狔犮 狅狆犾 犪 狊 犿 犪犺狔狅狆狀 犲 狌 犿 狅 狀 犻 犪 犲 )猪支原体肺炎又称猪气喘病 ,猪地方流行性肺炎 ,是由猪肺炎支原体引起的一种接触性呼吸系统传染病,是造成养猪业经济损失最重要的疾病之一 。该病以咳嗽和气喘为主要临床特征 ,病变部位主要在肺部,可见心叶 、中间叶和尖叶有融合性支气管肺炎变化 。该病广泛流行于世界各地 ,欧洲、亚洲、美洲以及大洋洲等主要养猪国家和地区均有发生 。 4 实验室生物安全要求 4.1 检测工作中的个人防护参照 G B1 9 4 8 9 。 4.2 实验室应遵循 G B1 9 4 8 9 和WS2 3 3—2 0 0 2对生物安全 2级(B S L  2)实验室的生物安全要求 。 4.3 使用过的实验用品应遵照 G B1 9 4 8 9 对废弃物的处理要求进行无害化处理 。 5 临床和病理学诊断 5.1 临床症状 猪支原体肺炎是一种发病率高死亡率低的慢性呼吸道传染病 ,主要临床症状为慢性干咳 。新发病猪群常呈急性 ,张口喘气 ,痉挛性阵咳 ,体温升高不明显 。咳嗽持续几周甚至数月 ,育肥猪咳嗽最严重 。部分患猪呈腹式呼吸 ,喘息沟明显 。患猪食欲减退 ,消瘦,被毛粗糙 ,生长停滞 。该病病程主要分急性 、 1犛 犖/犜4 1 0 4—2 0 1 5 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.慢性两种类型 。 5.2 病理学特征 主要病变见于肺 、肺门淋巴结和纵隔淋巴结 。急性死亡患猪肺有不同程度的水肿和气肿 。肉眼病 变类似于膨胀不全的肺 ,尤其在疾病的慢性阶段 。特征性病变是两肺的心叶 、尖叶和膈叶前缘发生对称性的实变 ,肺门淋巴结肿大 ,肺中间叶实变 ,以及肺门淋巴结肿大 、增生。病变最初为栗粒大至豆大呈均匀散布,逐渐扩展而融合成支气管肺炎 。病变部界限明显 ,灰白色,无弹性,呈“胰样” “鱼肉样” 。切开时,内有大量泡沫 。其他器官无明显变化 。 5.3 病理组织学检查 典型病变组织通过常规的病理学检查 ,支气管和细支气管上皮组织纤毛数量减少 ,小支气管周围的 肺泡扩大 ,泡腔充满多量炎性渗出物 ,肺泡间组织有淋巴样细胞增生 。急性病例中 ,扩张的泡腔内充满浆液性渗出物 ,杂有单核细胞 、中性粒细胞 、少量淋巴细胞和脱落的肺泡上皮细胞 。慢性病例中 ,其肺泡腔内的炎性渗出物中主要是淋巴细胞浸润 。 5.4 犡线检查 X线检查对本病的诊断有重要价值 ,对可疑患猪进行 X线透视,可做出诊断 。在X线检查时 ,猪只 以直立背胸位为主 ,侧位或斜位为辅 。病猪在肺野的内侧区以及心膈角区呈现絮状及片状阴影 。 6 病理分离和鉴定 6.1 材料准备 6.1.1 A 2 6肉汤:制备方法见附录 A。 6.1.2 固体培养基 :制备方法见附录 A。 6.1.3 厌气肉肝汤 :制备方法见附录 A。 6.1.4 血琼脂平板 :按G B4 7 8 9. 2 8 的方法配制 。 6.1.5 H a n k’s液:配制方法见附录 A。 6.1.6 0. 2 5%鸡红细胞液 :制备方法见附录 A。 6.1.7 灭菌干棉拭子 。 6.2 病料采集 6.2.1 活体病料采集 :用棉拭子深擦拭病猪的喉头或鼻腔 ,采集呼吸道分泌物 。 6.2.2 死后病料采集 :无菌采取病键交界处肺组织 。 6.3 病原分离 将病肺组织剪成小于 2mm3的碎块,浸入H a n k’s液中洗涤 ,除去血液和组织碎块 ,取3块~5块 浸泡在盛有 5mLA 2 6 肉汤的试管中 ;棉拭子浸入 1 0mLA 2 6 肉汤中清洗 ,并压出棉花中残液 ,再经 0. 4 5μm的滤膜过滤除菌 ,将滤液分装于试管中 。将上述试管置于含 5%~1 0% CO 2环境或用胶塞塞 紧管口,在3 7℃下进行培养 。1代~3代分离时 ,须每经3d~5d,以2 0%的接种量连续进行移植 ;4代~5代以后,再经5d~7d连续转移以提高分离率 。同时应设厌氧肉肝汤 、血琼脂平板作为细菌检查的对照。通过连续传代 ,当培养物出现有规则的变化时 ,应涂片镜检 ;同时将液体培养物作适当稀释后再接 2犛 犖/犜4 1 0 4—2 0 1 5 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.种于固体培养基上 ,在含5%~1 0% CO 2环境中3 7℃下培养3d~1 0d。培养时应逐日在低倍镜下观察,若出现圆形 、边缘整齐 、似露滴状 、中央有颗粒 、稍隆起的小菌落 ,判为可疑菌落 ,需进一步进行鉴定 。 6.4 生化鉴定 6.4.1 溶血试验 挑取可疑菌落接种含猪或鸡红细胞的固体培养基上培养 2d~3d,如为猪肺炎支原体 ,则菌落周围无溶血现象 。 6.4.2 精氨酸试验 挑取可疑菌落接种于含精氨酸及酚红指示剂的液体培养基中 ,由于猪肺炎支原体不能分解精氨酸产生氨,故如果指示剂不变色 ,试验为阴性 ,反之,则猪肺炎支原体为阳性 。 6.4.3 薄膜和斑点形成试验 挑取可疑菌落接种于含马血清的固体培养基上 ,由于猪肺炎支原体不能分解其中的脂肪酸 ,故如果在固体培养基上菌落的表面和周围不能形成薄膜和斑点 ,试验为阴性 ,反之,则猪肺炎支原体为阳性 。 6.4.4 红细胞吸附试验 将0. 2 5%鸡红细胞液滴加于可疑菌落上 ,静止后弃去红细胞液 ,用生理盐水冲洗 2次~3次,用低倍镜检查 ,如为猪肺炎支原体 ,可见菌落表面和周围吸附有大量红细胞 。 6.4.5 结果判定 以上试验皆为阳性者判为猪肺炎支原体 。 7 间接血凝试验 7.1 材料准备 7.1.1 9 6孔(1 2×8)V型反应板 ,微量移液器 ,微量振荡器等 。 7.1.2 猪肺炎支原体纯化灭活抗原 ,阳性血清 ,阴性血清 。 7.1.3 致敏红细胞 :为猪肺炎支原体纯化灭活抗原致敏的雄性绵羊红细胞 。 7.1.4 稀释剂:含1%健康兔血清 0. 0 1m o l /LP B S(pH7. 2) 。 7.2 操作方法 7.2.1 血清的处理 取被检血清 0. 2mL 于无菌小试管中 ,5 6℃水浴3 0m i n 灭活,冷却后加入 0. 3mL2% 戊二醛红细胞悬液,摇匀,置3 7℃水浴3 0m i n,离心后吸出血清供检验用 。阳性血清 、阴性血清的处理同被检血清。 7.2.2 血凝试验 见表1。 3犛 犖/犜4 1 0 4—2 0 1 5 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.表1 猪肺炎支原体间接血凝试验 孔号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 1 0 1 1 1 2 稀释倍数 1∶5 1∶1 0 1∶2 0 1∶4 0 1∶8 0 1∶1 6 0 1∶3 2 0 1∶6 4 01∶12 8 01∶25 6 0 对照 稀释剂 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 被检血清 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 弃去2 5 2%致敏 红细胞2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 2 5 作用时间 及温度震荡3 0s后,室温(1 8℃~2 5℃)静置2h 判定举例 ++++++++++++++++ ++ ++ + - - - 7.2.3 操作步骤 7.2.3.1 用微量移液器先向反应板每孔中加入 2 5μL稀释剂,再向第1孔加入2 5μL已处理好的被检 清,充分混匀后 ,吸取2 5

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